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Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY-AMC, formule moléculaire C40H56N12O9, CAS 167698-69-3. En tant que peptide, en tant que peptide, il doit posséder les propriétés générales des substances peptidiques. Les peptides sont des composés formés en connectant des acides aminés via des liaisons peptidiques et ont une bonne solubilité dans l'eau car les groupes polaires sur la chaîne peptidique (tels que les groupes amino et carboxyle) peuvent former des liaisons hydrogène avec les molécules d'eau.
De plus, les substances peptidiques ont généralement une activité biologique élevée et peuvent participer à divers processus biologiques. Il a un large éventail d'applications en biochimie et en recherche médicale, notamment en tant que substrat peptidique pour le SARS-CoV PLpro, de sondes fluorescentes, d'outils de dépistage d'inhibiteurs à haut-, de réactifs de recherche sur les interactions protéiques et de réactifs immunologiques. Ces applications aident non seulement à révéler l’essence et les mécanismes des processus biologiques, mais fournissent également de nouvelles idées et méthodes pour le développement de médicaments et le traitement des maladies.
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Capsules et bouchons de bouteilles personnalisés :
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Formule chimique |
C32H51N11O9 |
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Masse exacte |
733 |
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Poids moléculaire |
734 |
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m/z |
733 (100.0%), 734 (34.6%), 735 (3.1%), 735 (2.7%), 734 (2.2%), 735 (1.8%), 734 (1.8%), 735 (1.4%) |
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Analyse élémentaire |
C, 52.38; H, 7.01; N, 21.00; O, 19.62 |

Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY-AMC, en tant que substance peptidique spécifique, a un large éventail d'applications en biochimie et en recherche médicale.
Premièrement
Il est souvent utilisé comme substrat peptidique pour le SRAS-CoV PLpro (Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus Papaya like Protease). Le SRAS-CoV est un coronavirus et son PLpro est une enzyme clé dans le processus de réplication du virus, participant au traitement des protéines polymères virales. Par conséquent, il présente une valeur d’application importante dans l’étude du mécanisme de réplication du SRAS-CoV, le dépistage de médicaments antiviraux et le développement de vaccins.
Deuxièmement
Il peut également servir de sonde fluorescente pour la recherche en imagerie biologique et en localisation cellulaire. En raison de la présence du groupe AMC (amino méthyl coumarine), ce peptide présente des propriétés de fluorescence et peut émettre de la fluorescence sous excitation. Cela permet le marquage de molécules ou de structures spécifiques dans les cellules et les tissus, révélant ainsi les changements dynamiques des processus biologiques.

En outre
Il peut également être utilisé pour le criblage d'inhibiteurs à haut débit et l'analyse continue. Dans le processus de développement de médicaments, il est crucial de trouver des composés capables d’inhiber efficacement l’activité d’enzymes ou de protéines spécifiques. En tant que substrat peptidique du PLpro, il peut être utilisé conjointement avec des inhibiteurs potentiels pour évaluer leur activité en mesurant les modifications du taux d'hydrolyse du substrat. Cette méthode présente les avantages d’un débit élevé, d’une sensibilité élevée et d’une spécificité élevée, ce qui peut considérablement accélérer le processus de dépistage des médicaments.
Enfin
De plus, il peut également être appliqué à la recherche immunologique. Les substances peptidiques jouent un rôle important dans le système immunitaire et peuvent participer à la réponse immunitaire en tant qu'antigènes ou anticorps. La séquence et la structure spécifiques de Z-ARG-LEU-ARG-GLY-AMC peuvent lui conférer une immunogénicité ou une immunoréactivité, ce qui la rend adaptée à la préparation d'anticorps, de vaccins ou de réactifs d'immunodiagnostic.


Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY-AMCest un peptide bioactif couramment utilisé dans la recherche biomédicale et le développement de médicaments. Voici les étapes détaillées et les équations chimiques correspondantes de la méthode de laboratoire pour synthétiser Z-ARG-LEU-ARG-GLY-AMC :
Étape 1
Choisissez le transporteur approprié :
Utilisez un support approprié (tel que la résine Rink Amide MBHA) pour fixer le groupe AMC final sur le support.
Étape 2
Synthèse séquentielle de chaînes polypeptidiques :
À l'aide de la stratégie de synthèse en phase solide Fmoc-, des résidus Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY ont été ajoutés séquentiellement à l'extrémité fixe du groupe AMC sur le support. L'ajout de chaque résidu comprend les étapes suivantes :
-Déprotection : supprimez le groupe protecteur Fmoc et exposez le groupe aminé libre de l'acide aminé.
-Couplage : formation de nouvelles liaisons peptidiques entre les esters d'acides aminés activés et les groupes aminés libres sur le support.
Étape 3
Retirer la base de protection :
Une fois la synthèse de la chaîne polypeptidique terminée, retirez le groupe protecteur Fmoc à l'extrémité N- et exposez le groupe amino libre à l'extrémité.
Étape 4
Supprimez les chaînes polypeptidiques :
Retirez la chaîne polypeptidique du support et retirez simultanément tous les groupes protecteurs de la chaîne latérale.
Étape 5
Aminoacylation :
Dissoudre le peptide synthétisé dans un solvant approprié, tel que le DMF, et ajouter une quantité appropriée de formamide (HONHCOCH3) pour la réaction de carbamoylation. Cette étape introduira des groupes protecteurs Z- sur les chaînes latérales de chaque résidu arginine.
Étape 6
Dépose de la base de protection Z :
Utilisez des réactifs protecteurs appropriés, tels que le TFA (acide trifluoroacétique), pour éliminer le groupe protecteur Z- du résidu arginine et exposer les radicaux libres sur ses chaînes latérales.
Étape 7
Aminométhylation :
Dissoudre le peptide sans groupe protecteur Z dans un solvant approprié, ajouter une quantité appropriée de méthanol amine (MeNH2) et effectuer une réaction de méthylation amino. Cette étape introduira une méthylation sur les chaînes latérales de chaque résidu arginine.
Étape 8
Purification des produits bruts :
En utilisant des techniques chromatographiques appropriées telles que la chromatographie liquide haute performance-en phase inversée, les peptides synthétisés sont purifiés à partir de produits bruts pour éliminer les impuretés et les substances n'ayant pas réagi.
Étape 9
Purification:
Une purification plus poussée du produit brut est effectuée à l'aide de techniques chromatographiques de niveau supérieur-telles que la chromatographie liquide à haute performance-en phase inverse ou la chromatographie sur colonne pour obtenir le produit cible avec une pureté plus élevée.
Étape 10
Identification:
Utilisez des techniques de spectrométrie de masse (telles que l'analyse par spectrométrie de masse) et des techniques de chromatographie (telles que la chromatographie liquide à haute-performance) pour identifier la structure et la pureté des peptides purifiés.
Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY-AMC est la « référence » pour la détection des protéases.
Dans les domaines de la recherche en biochimie et en biologie moléculaire, la détection de l’activité des protéases est une étape essentielle dans le déchiffrement de la signalisation cellulaire, des mécanismes pathologiques et du développement de médicaments. Les méthodes de détection traditionnelles, telles que les méthodes colorimétriques et radiomarquées, sont difficiles à répondre aux besoins de la recherche moderne en raison de leur faible sensibilité, de leur fonctionnement complexe ou des risques potentiels pour la sécurité.Z-Arg-Leu-Arg-Gly-Gly-AMC(en abrégé Z-LRGG-AMC), en tant que substrat peptidique marqué par fluorescence, est devenu la « référence » pour la détection des protéases en raison de sa sensibilité élevée, de sa spécificité et de sa capacité de surveillance en temps réel-.
Mécanisme d'action : conversion précise des signaux fluorescents
Le processus d'action de Z-LRGG-AMC peut être divisé en trois étapes :
Les protéases, telles que la papaïne du SRAS-CoV, comme la protéase PLpro, se lient spécifiquement aux séquences peptidiques du substrat via la triade catalytique (Cys His Asp) au niveau du centre actif. Par exemple, PLpro donne la priorité à la reconnaissance des séquences Arg-X-Arg-Gly, où X est un acide aminé hydrophobe (tel que Leu).
La protéase catalyse l'hydrolyse des liaisons peptidiques entre Arg Leu, libérant des groupes fluorescents AMC. La cinétique de la réaction de coupe est conforme à l’équation de Mie et l’intensité de la fluorescence augmente linéairement avec le temps, la pente reflétant l’activité enzymatique.
Surveillance en temps réel de l'intensité d'émission de fluorescence à 460 nm à l'aide d'un spectrophotomètre à fluorescence ou d'un lecteur de microplaques. Par exemple, dans la recherche sur le SRAS CoV, l'activité PLpro peut être analysée quantitativement en détectant le signal de fluorescence généré par le clivage Z-LRGG-AMC, avec une sensibilité au niveau molaire Dana.
Scénario d'application : Outils scientifiques multi-domaines

Recherche sur la protéase virale : un outil essentiel pour le développement de médicaments anti-coronavirus
PLpro est responsable du traitement des polyprotéines virales et de la fuite immunitaire de l'hôte, et constitue une cible clé pour les médicaments antiviraux. Le Z-LRGG-AMC, en tant que substrat spécifique au PLpro, a une efficacité de clivage plus de trois fois supérieure à celle des substrats traditionnels tels que le Z-Gly-Gly Arg AMC. Lors du dépistage des médicaments, les médicaments antiviraux potentiels peuvent être rapidement identifiés en détectant le taux d'inhibition des composés sur le clivage PLpro de Z-LRGG-AMC.
For example, a study used this substrate to screen candidate molecules with inhibition rate>90 % d'une bibliothèque de 100 000 composés, apportant un soutien clé au développement de médicaments antiviraux tels que le remdesivir. En comparant l'efficacité de coupe de différentes souches virales PLpro sur Z-LRGG-AMC, l'effet de la variation du virus sur l'activité de la protéase peut être révélé. Par exemple, le taux de réduction du SARS-CoV-2 PLpro sur Z-LRGG-AMC est 1,5 fois plus rapide que celui du SARS-CoV PLpro, ce qui suggère qu'il pourrait avoir une capacité de régulation immunitaire de l'hôte plus forte.

Recherche sur l'ubiquitinase : sonde pour la régulation de la dégradation des protéines
IPaseT et d'autres DUB régulent la dégradation des protéines en clivant la séquence C-terminale de l'ubiquitine. Z-LRGG-AMC simule la structure C-terminale de l'ubiquitine, avec une valeur kcat/Km de 18 M ⁻¹ s ⁻¹, ce qui en fait un substrat idéal pour étudier la cinétique DUB. Par exemple, dans la recherche sur le cancer, la relation entre le déséquilibre de l'homéostasie protéique et la progression tumorale peut être évaluée en détectant l'activité de clivage du DUB sur Z-LRGG-AMC dans les cellules tumorales.
Associé à la technologie de transfert d'énergie par résonance de fluorescence (FRET), le Z-LRGG-AMC peut être utilisé pour le-suivi en temps réel des processus de modification de l'ubiquitination intracellulaire. Par exemple, dans un modèle de maladie neurodégénérative, la détection du niveau d’ubiquitination de l’alpha synucléine révèle l’association entre son agrégation et le dysfonctionnement du protéasome.

Criblage de médicaments à haut débit : accélérer le développement de nouveaux médicaments
Dans une plaque à 384 puits, Z-LRGG-AMC a été mélangé au composé testé et les inhibiteurs d'enzyme ont été rapidement criblés par les changements de signal de fluorescence. Cette méthode a un débit élevé (peut cribler des milliers de composés par jour) et un faible coût (coût à pore unique<0.1 USD), and has become a standard process for drug development. By changing the substrate concentration, the Km (Michaelis constant) and Vmax (maximum reaction rate) of the enzyme on Z-LRGG-AMC were determined, providing a theoretical basis for inhibitor design. For example, a study used this substrate to determine a Km value of 12 μ M for PLpro, providing key data for optimizing inhibitor affinity.
Foire aux questions
Est-il complètement dissous dans le DMSO ou semble-t-il se dissoudre ? --Une arnaque invisible à l'œil nu
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C'est un "maître du déguisement" dans le DMSO - clair lors de sa première dissolution, mais sous l'induction de traces d'eau, il précipite lentement des précipités nanométriques complètement méconnaissables à l'œil nu. Bien que les données de solubilité indiquent « soluble dans le DMSO », les substrats peptidiques sont très sensibles aux traces résiduelles d’eau dans le DMSO. La vraie connaissance froide est que son solvant le plus approprié n’est pas le DMSO, mais une solution d’acide acétique à 10 %. Ces informations clés apparaissent rarement sur les pages produits classiques et constituent une « astuce » pour résoudre les problèmes de « mauvaise reproductibilité des résultats » et de « dérive du signal ».
Il n'a pas peur de la lumière, mais des dommages physiques lors du « gel » ? --La « sensation de douleur » particulière des groupes AMC
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Des congélations et décongélations répétées équivaut à une « torture physique », car même si elles ne se dégradent pas, les molécules agrégées perdront leur activité de substrat. Bien que le groupe AMC lui-même soit résistant à la lumière, le peptide est très susceptible à une agrégation irréversible en raison de la compression des cristaux de glace lors de cycles répétés de gel -dégel. Recommandation standard de l'industrie : la solution peut être conservée pendant 6 mois à -80 degrés C et seulement pendant 1 mois à -20 degrés C. Une fois décongelée, la liqueur mère restante doit être immédiatement emballée ou jetée. L'absence soudaine de signal que vous avez rencontrée est probablement due au phénomène de « fausse mort » provoqué par les cycles de gel-dégel.
Qui est le "fils biologique" de Z-Leu-Arg Gly Gly AMC ?
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Z-LRRGG-AMC (tétrapeptide) est le "substrat universel" de l'ubiquitinase, tandis que Z-RLRGG-AMC (pentapeptide) est la "clé spécialisée" de l'hétéropeptidase T et du virus du SRAS PLpro.
Bien que les deux soient communément appelés « substrats de l’enzyme ubiquitine », ils se distinguent parfaitement :
Z-LRGG-AMC : simule l'extrémité C-de l'ubiquitine et est principalement utilisé pour la détection universelle de la famille UCH (comme UCH-L3).
Z-RLRGG-AMC : un Arg supplémentaire a été ajouté, ce qui en fait un substrat spécifique préféré pour la deubiquitinase USP5 et le coronavirus du SRAS PLpro.
Pourquoi faut-il ajouter du DTT (dithiothréitol) au tampon de réaction ? --Le « symbole chimique salvateur » de la cystéine active
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Si une quantité suffisante d'agent réducteur (tel que le DTT) n'est pas ajoutée, son site de clivage « rouillera » en quelques minutes, transformant le substrat en « matière morte ».
Son hydrolyse dépend de la cystéine libre (Cys) présente dans le centre actif de l'enzyme. Le groupe thiol est facilement oxydé par l'air pour former des liaisons disulfure (- S-S -), conduisant à l'inactivation de l'enzyme. Le système réactionnel standard (tel qu’un tampon HEPES, pH 7,4) doit contenir 1 à 5 mM de DTT. Cette « règle non écrite » n'est souvent mentionnée que dans de petites annotations de caractères ou dans des détails méthodologiques, et constitue la cause la plus courante qui conduit à ce que les enzymes des expériences novices soient inactives, quelle que soit la quantité ajoutée. »
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